Меню

Fip у кошек сухая форма

Fip у кошек сухая форма

Ключевые слова: влажная форма кошачьего инфекционного перитонита, фосфорилированные полипренолы, FIP

Сокращения: АлАТ — аланинаминотрансфераза, АсАТ — аспартатаминотрансфераза, АТФ — аденозинтрифосфат, в/в — внутривенно, в/м — внутримышечно, ГГТ — гамма-глутамилтранспептидаза, ГЛДГ — глутаматдегидрогеназа, ИЛ — интерлейкин, ИФН — интерферон, ЛДГ — лактатдегидрогеназа, МЕ — международная единица, п/к — подкожно, ПЦР — полимеразная цепная реакция, СДГ — сорбитолдегидрогеназа, СОЭ — скорость оседания эритроцитов, УЗИ — ультразвуковое исследование, ЧСС — частота сердечных сокращений, ЩФ — щелочная фосфатаза, ЭКГ — электрокардиография, ЭОС — электрическая ось сердца, FIP — feline infectious peritonitis (кошачий инфекционный перитонит), fL — фемтолитр, PI — рolyprenyl immunostimulant (иммуномодулятор на основе фосфорилированных полипренолов шелковицы)

Несмотря на значительный прогресс в ветеринарной медицине, FIP остается одним из самых загадочных, опасных и неизлечимых заболеваний. Ранее в редакционной статье [3] сообщалось о выступлении доктора Альфреда Лежандра на состоявшемся в 2011 г 33-м ежегодном симпозиуме Winn Feline Foundation, посвященном проблеме лечения FIP. В докладе речь шла об особенностях и перспективах применения PI в качестве единственного средства этиотропной терапии сухой формы FIP. Всего PI применяли при лечении 102 кошек с сухой формой FIP, причем почти 20 % пациентов продолжают жить более года после начала лечения. У них отмечено улучшение общего состояния и качества жизни. В нашей стране также делались попытки терапии FIP при использовании в качестве этиотропных средств фосфорилированных полипренолов различного происхождения — фоспренила и гамапрена [3, 4]. В настоящей статье описаны случаи лечения влажной формы FIP с использованием оригинальной комплексной методики, разработанной ветеринарным врачом И.О. Переслегиной.

Описание клинических случаев

Клинический случай № 1. Осенью 2011 г. на прием поступил пациент — кот Персик, возраст 1 год, порода русская голубая. Жалобы владельцев: кота привезли с дачи, через две недели заметили, что он худеет. Поноса нет, аппетит сохранен. Были отмечены судороги, кот временами задыхается.

Клинические исследования. При пальпации установлено: живот увеличен, при подъеме за передние лапы жидкость переливается вниз, что придает животу грушевидную форму. Отмечена тахикардия (пульс 140-152 уд/мин), тоны сердца жесткие, аритмия.

При ЭКГ определен эктопический нерегулярный ритм; ЧСС: среднее значение — 209 уд/мин, максимальное — 230 уд/мин, минимальное — 187 уд/мин; отклонение ЭОС влево, блокада левой ножки пучка Гиса, гипертрофия левого предсердия.

При УЗИ обнаружено: скопление в брюшной полости 35-45 мл жидкости, структура печени неоднородная, повышенной зернистости, эхогенность L = 82. 85 (норма 65. 68), печень выступает за край реберной дуги (увеличена). Края печени ровные, острые. Желчный пузырь в форме песочных часов (с перетяжкой в середине), умеренно наполнен, осадка в просвете нет. Поджелудочная железа увеличена (в норме не удается визуализировать), уплотнена, структура нарушена. Почки без выраженных изменений. Мочевой пузырь наполнен, стенки тонкие, в просвете мелкие эхогенные образования, не отбрасывающие акустической тени.

Кровь из вены отдали на клинический и биохимический анализы (табл. 1). Выявлено резкое увеличение уровня глобулинов, драматическое снижение соотношения альбумин/глобулин на фоне умеренной анемии и гипербилирубинемии. Отмечено существенное повышение активности ферментов СДГ, ГЛДГ, АсАТ, АлАТ, ГГТ, ЛДГ и ЩФ. Кроме того, кровь и выпотную жидкость исследовали на FIP с помощью метода ПЦР (наличие коронавируса FIP подтвердилось в обоих случаях).

Поставлен предварительный диагноз — влажная форма FIP.

Терапия. Коту медленно промыли кишечник отваром ромашки, затем ввели per rectum 5 мл фоспренила (глубоко, на 8 см), подогретого до 40°С. Через 2 ч процедуру повторили. Затем дали еще 3 мл теплого фоспренила per os и продолжали давать его каждые 2 ч в течение ночи.

На следующий день схема терапии была такова: ветранквил — 0,3 мл в/м, фоспренил — 1,5 мл в/м, гептрал — 1,5 мл в/м; АТФ — 0,4 мл (на растворе Рингера) в/в, хлорид кальция — 0,5 мл (на физрастворе) в/в, тиосульфат натрия — 1,0 мл (на физрастворе) в/в, траумель — давали каждый час per os по 1,0 мл, фосфор гомаккорд 1,0 мл в/в; пумпан 5 капель 4 раза в день (в водном растворе) per os.

На 3-й день: ветранквил 0,3 мл в/м, панангин 0,8 мл в/в, рибоксин 1,0 мл в/в, АТФ 0,4 мл в/в, раствор Рингера 50,0 мл в/в. В брюшину ввели 20,0 мл физраствора (катетер расположили с левой стороны от белой линии, отступив 2-3 см от ребра), затем в течение 10-15 мин кота аккуратно переворачивали с бока на бок и массировали ему живот. Откачанная жидкость была характерна для влажной формы FIP: соломенного цвета, без запаха, достаточно вязкая, сильно пенящаяся, слегка опалесцирующая, с белыми хлопьями; общий объем жидкости (учитывая введенный физраствор) — около 65 мл. Сразу после этого в брюшину с помощью 2 разных шприцов были введены теплые (40°С) растворы по 20 мл: фоспренил с физраствором (10:10) и диоксидин 0,5% с физраствором (10:10). В вену дополнительно инъецировали еще 2 мл траумеля. Поставили клизму с фоспренилом, дополнительно в/в ввели метронидазол, в/м бициллин-3, в/м гептрал, фуросемид 0,3 мл в/м. Траумель назначали 4 раза в день по 1,0 мл п/к.

После окончания манипуляций пациент чувствовал себя нормально, через 1 ч даже проявил некоторую активность (поиграл).

В течение двух следующих дней пациента лечили по схеме:

утро (все препараты давали в тех же дозировках, что накануне) — АТФ в/в, траумель п/к, ветранквил в/м, панангин в/в, рибоксин в/в, гептрал в/м, фосфор гомаккорд п/к, тиосульфат натрия в/в, контрикал 5000 ед. в/в, пумпан 5 капель 3 раза в день, фоспренил 3,0 мл per os 3 раза в день, фоспренил в клизме после ромашки (теплый) 5,0 мл;

вечер — гамавит 2,0 мл в/в, траумель 1,0 мл п/к, гептрал 1,5 мл в/м, маннитол 10,0 мл в/в, фоспренил в клизме (теплый) 5,0 мл.

Состояние пациента было стабильным, аппетит сохранен, температура 39. 39,3°С.

На третий день в брюшной полости снова скопилась жидкость. Повторили процедуру с проколом брюшной полости. Объем асцита уменьшился до 40 мл вместе с физраствором. Манипуляции повторены.

В схему лечения добавили кардус и берберис (по 1,0 мл п/к). Судороги прекратились. Фосфор гомаккорд назначен 1 раз в три дня по 1,0 мл п/к. Живот уменьшился в объеме, при пальпации жидкость не выявлялась. Кот активно питался. Тиосульфат натрия отменен, доза маннитола снижена до 5,0 мл (очень активное мочеотделение).

К вечеру четвертого дня отмечено: жидкости в брюшной полости осталось всего около 20 мл по оценкам УЗИ. Ввели 10 мл физиологического раствора, вышло чуть больше 20 мл. Жидкость намного светлее, хлопьев нет. Пенилась намного меньше, вязкость также уменьшилась. Введен теплый фоспренил — 10 мл.

Терапия на следующей неделе включала в себя АТФ 0,4 мл в/в 7 дней; фоспренил 3,0 мл per os 3 раза в день; фоспренил 5,0 мл в клизме 1 раз в день (теплый); затем наринэ-форте (согрет в руке) 3,0 мл через 1 ч в клизме; рибоксин 1 мл 2 раза в день в/в; панангин 1, 5 мл в/в 1 раз в день; фосфор гомаккорд 1,0 мл п/к 1 раз в день (3 дня); мукоза композитум 1,0 мл п/к через день (2 недели); берберис 1,0 мл п/к 3 раза в неделю; хелидониум 1,0 мл п/к 3 раза в неделю; гамавит 1 мл п/к 2 раза в день (до 10 дней); пумпан 5 капель 3 раз в день 1 мес; бициллин 3600 тыс. ед.; контрикал 5 тыс. ед. на физрастворе (довести до 10 инъекций в/в); траумель по 1/2 табл. 2 раза в день натощак.

Читайте также:  Аналог гемобаланса для кошек

Через неделю сделаны повторные анализы крови (см. табл. 1): показатели, в том числе СОЭ, нормализовались, содержание гемоглобина увеличилось. Асцитная жидкость в брюшной полости отсутствовала, пациент чувствовал себя хорошо.

Данные на начало 2013 г.: кот активен и хорошо себя чувствует. Очередной анализ крови сделан 17.01.2013, то есть через 15 мес после постановки диагноза. Как видно из представленных в таблице 1 данных, практически все показатели находятся в пределах нормы.

1.Данные клинического и биохимического анализов крови кота Персика (клинический случай №1)
Параметр Данные пациента Норма
При поступлении Через неделю Через 15 месяцев
Клинический анализ
Лейкоциты, тыс./мкл 27,8 17,1 9,4 5,5. 19,5
Эритроциты, млн/мкл 4,3 7,07 7,1 6,6. 9,4
Гемоглобин, г/л 76 110 83 80. 150
Гематокрит, % 22,1 51,5 33,5 30. 45
Тромбоциты, •10 9 /л 455 221 150. 400
СОЭ, мм/ч 15,7 5,5 2,5 2,5. 3,5
Средний объем эритроцитов, fL 72,8 47,3 41. 56,2
Среднее содержание гемоглобина в эритроците, пг 15,5 11,7 11. 17
Средняя концентрация гемоглобина в эритроците, Г/дл 21,3 24,7 19,5. 34,8
Анизоцитоз эритроцитов, % 9,2 7,5 8,3 ±0,87
Лейкограмма, %:
базофилы
эозинофилы
миелоциты
юные
палочкоядерные
сегментоядерные
лимфоциты
моноциты
0
5
0
1
8
51
32
3
0
3
0
0
9
68
19
1
0
5
0
1
7
48
37
2
0. 1
2. 8
0
0. 1
3. 9
40. 68
36. 51
1. 5
Биохимический анализ
Общий белок, г/л 98 78,8 59. 78
Альбумин, г/л 40 41,5 34. 40
Глобулин, г/л 89 25. 37
Альбумин/глобулин 0,44 0,7. 1,9
Глюкоза, ммоль/л 8 1,98 3,33. 4,4
Бикарбонат, ммоль/л 19 23,7 18,1. 24,5
Щелочной резерв, об% СО2 54 51,3 46. 51
СДГ, МЕ/л 11 3,8 3,1. 7,6
ГЛДГ, МЕ/л 234 101 75. 230
АсАТ, МЕ/л 51,5 41,5 12. 40
АлАТ, МЕ/л 86,7 74,8 28. 76
Коэффициент Ритиса 0,59 0,6 0,6 ± 0,2
ЩФ, МЕ/л 92 87 0. 62
ГГТ, МЕ/л 11 15,3 2,5 10,5
ЛДГ, МЕ/л 212 103 до 193
Альфа-амилаза, МЕ/л 2200 1710 до 1650
Аммиак, ммоль/л 19,0 40,2 15. 40
Креатинин, мкмоль/л 140 45 44. 138
Мочевина, ммоль/л 4,1 3,2 5. 10
Натрий, ммоль/л 201 195 183. 196
Кальций, ммоль/л 3,0 2,1 1,79. 2,84
Железо, мкмоль/л 3,8 5,12 3,9. 12,7
Калий, ммоль/л 4,4 5,75 4,6. 6,1
Хлориды, ммоль/л 121 110 102. 117
Медь, мкмоль/л 16,4 12,3 12. 14
Цинк, мкмоль/л 25,3 23,7 11. 24
Магний, ммоль/л 0,9 1,03 1,03. 1,42
Фосфор, ммоль/л 1,45 1,12 0,97. 1,45
Бета-липопротеиды,10 3 г/л 299 230 250. 280
Холестерин, ммоль/л 10,1 2,88. 9,23
Липаза, МЕ/л 402 104 0. 375
Триглицериды, ммоль/л 1,02 0,24. 0,98
Билирубин, мкмоль/л: общий
конъюгированный
неконъюгированный
3,99
0,3
3,69
4,73
0,31
4,42
0. 6,84
0. 1,71
0. 5,13

Клинический случай № 2. В сентябре 2008 г. на прием поступила кошка Крыся, метис, возраст 6 мес. По данным анамнеза: кошку привезли из дома отдыха на Украине, где подобрали бездомной. Начала «пухнуть» через 2 недели после приезда в Москву. Владельцы наблюдали понос, который прошел после приема ветома. Пьет мало, играет, для дегельминтизации давали мильбемакс.

Клинические исследования. При осмотре установлено: живот увеличен, круглый. Слизистые оболочки глаз бледные, в ротовой полости цианотичные, температура 39,4°С, аппетит сохранен. При пальпации живота выявлена флюктуация.

Посредством УЗИ в брюшной полости обнаружено значительное количество жидкости (рис. а). Печень не выступает за край реберной дуги, уменьшена в размерах. Структура печени крупнозернистая с диффузной эхонеоднородностью. Эхогенность паренхимы печени L= 45. 50.

При клиническом анализе крови отмечены снижение гематокрита, умеренная анемия (табл. 2): при биохимическом анализе — повышение содержания общего белка, глобулина, мочевины, активности АсАТ, АлАТ, ЩФ, ГГТ, а также резкое снижение соотношения альбумин/глобулин.

В сочетании с клиническими признаками, результаты УЗИ, анализов крови и выпотной жидкости послужили основанием для постановки предварительного диагноза влажной формы FIP.

Терапия. Была назначена терапия, аналогичная той, что в описанном выше клиническом случае.

Повторный прием состоялся 6 октября 2008 г. При УЗИ отмечены такие признаки: печень размером 7,5 см, незначительно выходит за край реберной дуги, однородной эхоструктуры, крупнозернистая, сосуды переполнены кровью. Контур ровный, острый. В брюшной полости небольшое количество жидкости (рис. б). Перистальтика кишечника сохранена.

22 октября по данным УЗИ жидкости в брюшной полости практически не осталось (рис. в).

25 декабря повторный прием — состояние пациента нормализовалось, визуально кошка клинически здорова. Взяты повторные анализы (см. табл. 2).

На 13 февраля 2013 г. пациентка жива, отлично выглядит, бодра и игрива.

Рис. Сонограммы кошки Крыси:

а — на первом приеме 22.09.2008. В брюшной полости значительное количество жидкости;
б — на приеме 06.11.2008. В брюшной полости небольшое количество жидкости; Перистальтика кишечника сохранена;
в — на приеме 22.10.2008. Жидкости в брюшной полости практически не осталось

2.Данные клинического и биохимического анализов крови кошки Крыси (клинический случай №2)
Параметр Данные пациента Норма
22.09.2008 22.10.2008 25.12.2008
Клинический анализ
Лейкоциты, тыс./мкл 19 40,9 33,1 5,5. 19,5
Эритроциты, млн/мкл 4,1 4,6 5,0 6,6. 9,4
Гемоглобин, г/л 41 60 80. 150
Гематокрит, % 29 23,1 30,0 30. 45
Средний объем эритроцитов, fL 57,4 54,9 41. 56,2
Среднее содержание гемоглобина в эритроците, пг 8 10 11. 17
Биохимический анализ
Общий белок, г/л 85 82 81 59. 78
Альбумин, г/л 20 21 27 34. 40
Глобулин, г/л 62 61 54 25. 37
Альбумин/глобулин 0,32 0,35 0,5 0,7. 1,9
Глюкоза, ммоль/л 3,8 4,0 3,33. 4,4
Бикарбонат, ммоль/л 18 18 18,1. 24,5
Щелочной резерв, об% СО2 45 46 46. 51
ГЛДГ, МЕ/л 241 215 75. 230
АсАТ, МЕ/л 52 68 49 12. 40
АлАТ, МЕ/л 87 92 74 28. 76
Коэффициент Ритиса 0,59 0,73 0,66 0,6±02
ЩФ, МЕ/л 79,8 54 48 0. 62
ГГТ, МЕ/л 10,2 8,9 8,1 2,5. 10,5
ЛДГ, МЕ/л 60,8 61,2 до 193
Альфа-амилаза, МЕ/л 1570 1230 до 1650
Аммиак, ммоль/л 19,8 18,3 15. 40
Креатинин, мкмоль/л 131 110 44. 138
Мочевина, ммоль/л 6,0 8,4 3,2 5. 10
Натрий, ммоль/л 160 151 183. 196
Кальций, ммоль/л 1,4 1,65 1,79. 2,84
Калий, ммоль/л 3,3 4,8 4,6. 6,1
Хлориды, ммоль/л 129 118 102. 117
Медь, мкмоль/л 16,9 14,1 12. 14
Цинк, мкмоль/л 29,2 26,4 11. 24
Магний, ммоль/л 0,54 0,70 1,03. 1,42
Фосфор, ммоль/л 2,07 2,07 0,97. 1,45
Липаза, МЕ/л 320 320 0. 375
Билирубин, мкмоль/л:
общий
конъюгированный
неконъюгированный
7,9
2,38
5,52
6,8
1,91
4,89
0. 6,84
0. 1,71
0. 5,13
Читайте также:  Антисептические мази для кошек

Обсуждение

Экссудативный (влажный) перитонит — наиболее тяжелая клиническая форма FIP, которая обычно довольно быстро, в течение буквально нескольких недель, приводит к летальному исходу. В настоящей статье описаны два случая успешной терапии влажной формы FIP. Диагноз ставили на основании данных клинического осмотра, анализа перитонеального экссудата, а также результатов УЗИ, ПЦР, клинического и биохимического анализов крови. У обоих пациентов выявлен асцит с жидким экссудатом, характерным для влажной формы FIP: жидкость соломенного цвета, без запаха, достаточно вязкая, сильно пенящаяся, слегка опалесцирующая, с белыми хлопьями. При первичном анализе крови обнаружено резкое увеличение содержания глобулинов, а также драматическое снижение соотношения альбумин/глобулин на фоне умеренной анемии и гипербилирубинемии. Кроме того, выявлено существенное повышение активности СДГ, ГЛДГ, АсАТ, АлАТ, ГГТ, ЛДГ и ЩФ. Повышенная концентрация глобулинов в плазме крови наряду со сниженным коэффициентом соотношения альбумин/глобулин служит одним из наиболее стабильно выявляющихся показателей при FIP [2, 5]. В сочетании с клиническими признаками, данными УЗИ, ПЦР, результатами анализа крови и выпотной жидкости это послужило основанием для постановки предварительного диагноза влажной формы FIP.

После вынесения такого диагноза терапия традиционно направлена на снижение деструктивных воспалительных проявлений и облегчение состояния животного. Считается, что влажная форма FIP неизлечима и быстро ведет к смерти пациента.

К признакам ремиссии относят отсутствие или существенное снижение объема перитонеально-плевральной выпотной жидкости, исчезновение или значительное уменьшение клинических симптомов, снижение содержания глобулина, повышение соотношения альбумин/глобулин в крови, нормализация гематокрита и набор массы тела [5, 9].

В процессе терапии обоих пациентов с помощью оригинального подхода, разработанного ветврачом И.О. Переслегиной, удалось достаточно быстро и последовательно добиться достижения всех описанных выше показателей, свидетельствующих о наступлении ремиссии. С особым удовлетворением отмечаем, что оба пациента живы уже в течение более чем длительного срока после установления диагноза влажной формы FIP — 15 мес и 52 мес, соответственно.

Описанная в настоящей статье комплексная методика терапии, хотя и довольно непроста, но полностью воспроизводима (в настоящий момент по этой методике вылечено и продолжает лечиться уже около десятка пациентов). При этом в качестве средства этиотропной терапии использованы предварительно подогретые фосфорилированные полипренолы. Отметим, что ветеринарные препараты на основе фосфорилированных полипренолов, выделенных либо из листьев шелковицы, либо из хвои, изучены в РФ довольно многосторонне. На их основе созданы и широко применяются в ветеринарной практике препараты гамапрен и фоспренил. Показано, что эти препараты обладают как иммуномодулирующим, так и противовирусным действием. Скорее всего, их терапевтический эффект при инфекционном коронавирусном перитоните проявляется комплексно. С одной стороны, эти препараты оказывают противовирусное действие при экспериментальной коронавирусной инфекции, вызванной, например, вирусом гепатита мышей. С другой стороны, после введения в организм при вирусной инфекции фоспренил и гамапрен активируют макрофаги и стимулируют раннюю продукцию ключевых цитокинов (ИЛ-12, ИФН-γ), обеспечивающих формирование Th1 иммунного ответа, которое нарушено при вирусном инфекционном процессе. Это представляется крайне важным с учетом данных о том, что развитие FIP у кошек после заражения коронавирусом напрямую связывают с отсутствием выработки ИЛ-12, необходимого для развития эффективного клеточного иммунного ответа [7]. Более того, при слабом клеточно-опосредованном иммунном ответе, когда наблюдается массовое размножение коронавирусов в макрофагах, заболевание переходит во влажную форму. Это позволяет предположить, что препараты на основе фосфорилированных полипренолов, активирующие макрофагальную активность, можно использовать не только для терапии, но и для профилактики влажной формы FIP. Это особенно важно, поскольку иные рекомендованные способы терапии FIP с использованием ИФН-омега, рекомбинантного кошачьего ИФН, глюкокортикоидов и циклофосфамида показали крайне низкую эффективность [6, 9]. Еще одним, хотя и косвенным свидетельством в пользу эффективности фосфорилированных полипренолов при FIP, служит тот факт, что для этого заболевания характерен феномен антителозависимого усиления вирусной инфекции [10]. Аналогичное явление характерно и для флавивирусных инфекций, при которых препараты на основе фосфорилированных полипренолов особенно эффективны [1].

Что касается данных о ремиссии, достигнутой у кошек при использовании PI, то они получены при терапии только сухой (неэкссудативной) формы FIP [8]. По мнению авторов, PI может рассматриваться как перспективное средство этиотропной терапии сухой формы FIP.

Источник

Вирусный перитонит у кошек

Пути заражения и распространение

Клинические признаки вирусного перитонита кошек

Лечение вирусного перитонита у кошек

ПАТОГЕНЕЗ

Появление FIP связано с мутацией кошачьего коронавируса (FCoV). При заражении коронавирусом репликация вируса происходит в эпителиальных клетках дыхательного тракта и кишечнике. Начальная стадия коронавируса кошек обычно бессимптомна, но в редких случаях проявляется энтеритом лёгкой и средней степени. Мутация коронавируса в вирусный перитонит чаще происходит после стрессовой ситуации в жизни кошки, сопровождающиеся снижением иммунного статуса организма.

Инфицируя кишечный эпителий коронавирус кошек FCoV проходит через слизистый барьер кишечника, мутирует в инфекционный перитонит (FIP) и реплицируется в моноцитах/макрофагах, получая доступ к крови. Далее ИПК накапливаясь в стенках кровеносных сосудов увеличивает их проницаемость, это приводит к выведению белков из кровеносных сосудов и образованию выпотной жидкости. Таким образом развивается «влажная» или экссудативная форма вирусного перитонита. Обычно экссудативная форма проявляется в течение 3–6 недель после стрессовой ситуации в жизни кошки.

«Сухая» не экссудативная форма вирусного перитонита, проходит без изменения проницаемости стенок кровеносных сосудов и характеризуется образование гранулём во внутренних органах.

Серологический тест ИФА для определения антител к коронавирусной инфекции кошек, используемые лабораторией «Шанс Био» так же доказывает взаимосвязь коронавируса (FCoV) и инфекционного перитонита кошек (FIP). Около 80% кошек с перитонитом FIP имели высокий титр антител к коронавирусу>1:160, у оставшихся 20% титр находился в зоне 1:20-1:160, что так же подтверждает заболевание коронавирусом кошек (FCoV).

ПУТИ ЗАРАЖЕНИЯ И РАСПРОСТРАНЕНИЕ

алиментарный (через зараженные фекалии)

вертикальный (от инфицированной кошки-котятам)

половой (при вязках с вирусоносителем)

7% домашних кошек с коронавирусом заболевают инфекционным перитонитом (FIP). У кошек, живущих группами вирусный перитонит (FIP) проявляется чаще.

Клинические признаки экссудативного «влажного» перитонита:

наличие асцитной и/или выпотной жидкости

при выпоте в плевральную полость – нарушение дыхания

кошка вялая, потеря аппетита приводит к анорексии

патологический процесс ИПК приводит к дисфункции других органов брюшной полости, чаще почечной недостаточности, изменениям в работе печени, поджелудочной железы.

увеличиваются мезентериальные лимфатические узлы и печень, при пальпации прощупываются

Клинические признаки не экссудативного «сухого» перитонита:

отсутствие аппетита, анорексия

чаще отмечается поражение центральной нервной системы: вестибулярные расстройства, судороги, недержание мочи, изменения в поведении

нистагм глаз в связи с развитием гидроцефалии

увеличиваются мезентериальные лимфатические узлы и печень, при пальпации прощупываются

образование пиогранулем в почках

изменение размера стенки толстой кишки

ДИАГНОСТИКА ВИРУСНОГО ПЕРИТОНИТА

Диагностика коронавирусной инфекции достаточно проста, но поставить диагноз вирусный перитонит кошек (FIP) очень сложно. Существующие тест-системы направлены на определение коронавируса кошек (FCoV).

Ниже представлен алгоритм диагностики вирусного перитонита кошек.

Изменения в биохимическом анализе крови при инфекционном перитоните кошек (FIP):

Источник



Инфекционный перитонит кошек (FIP)

Инфекционный перитонит кошек (FIP) – это инфекционная причина смерти кошек. FIP возникает, когда кошка неподходящим образом реагирует на инфицирование кошачьим коронавирусом (FCoV). Большинство кошек после инфицирования выделяют коронавирус в течение 1-2 месяцев, формируют иммунный ответ, элиминируют вирус и живут дальше вполне счастливо. Конечно, пока мы не можем полностью понять, как происходит избавление от коронавирусной инфекции кошек и, к сожалению, почему у некоторых кошек развивается FIP.

Читайте также:  Если кошка пришла спать ко мне

Само название FIP несколько ошибочно: FIP – не воспалительное заболевание брюшной полости, а скорее васкулит (воспаление кровеносных сосудов). Клинические признаки, развивающиеся у больных кошек, зависят от поражения кровеносных сосудов, снабжающих органы брюшной полости.

Влажный или выпотной FIP.

Это острая форма заболевания, при которой серьезно поражаются многие кровеносные сосуды, и жидкость из них пропотевает в брюшную или грудную полость. Когда поражаются кровеносные сосуды живота, у кошки опухает живот, как при асците. Если же поражаются кровеносные сосуды грудной полости, жидкость скапливается в груди, нарушая способность легких расширяться на вдохе, что проявляется тяжелым дыханием.

Сухой или невыпотной FIP.

Сухой FIP – более хроническая форма заболевания. При сухом FIP клинические признаки у кошек часто нехарактерные, такие как отказ от корма, снижение веса, сухость кожного покрова. Многие кошки с сухим FIP могут демонстрировать желтушность кожи и склеры глаза. Если у кошки бледный нос, то Вы можете заметить, что он пожелтел. Многие кошки с сухим FIP имеют признаки поражения глаз: радужная оболочка меняет цвет, часть ее может стать коричневой.

FIP считается пресловуто сложным для диагностики состоянием из-за наличия многих заболеваний с очень похожими признаками. Окончательный диагноз возможно поставить только посмертно или, иногда, по биопсии (размышляя о точности результатов биопсии надо помнить о том, что пиогранулематозные поражения, выявленные при биопсии могут быть показанием для лапаротомии). Только в 18% образцов, присланных нам в лабораторию, был обнаружен FIP. Поскольку кошек с FIP обычно усыпляют, чрезвычайно важно дифференцировать FIP от других, поддающихся лечению заболеваний.

В лаборатории университета Глазго используются методы диагностики, которые подтверждают или исключают диагноз «FIP» с вероятностью 90%. Диагностика FIP у нас состоит из четырех компонентов: определение титра антител к коронавирусу, определение соотношения альбуминов/глобулинов в выпотной жидкости или плазме крови, определение уровня альфа-1 кислого гликопротеина (AGP) и цитология/гематология.

Диагностика выпотного (влажного) FIP. Титр антител к коронавирусу кошек.

Наличие антител указывает на то, что кошка была инфицирована коронавирусом, причиной FIP. При влажной форме FIP можно обнаружить различные титры антител к коронавирусу, но в большинстве случаев FIP уровень антител исключительно высок (1280 и выше). В случаях, когда антитела не обнаружены, это свидетельствует о том, что у кошки нет инфекционного перитонита (конечно, если другие признаки позволяют подозревать FIP у кошки с нулевым титром антител, то в такой ситуации необходимо проводить другие исследования, например ПЦР-диагностику на обнаружение РНК коронавируса в образцах асцитической жидкости. У этих кошек слишком много вирусов находится в выпотной жидкости, и антитела связывают их, ограничивая возможности теста).

Внимание! Многие здоровые кошки и кошки с другими заболеваниями могут иметь антитела к коронавирусу. Обнаружение только антител к коронавирусу НЕ является диагностическим критерием FIP, если остальные параметры диагностики FIP не выявлены).

Общее содержание белка в выпотной жидкости и соотношение альбумин/глобулин (A/G).

Общее содержание белка в выпотной жидкости у кошек с FIP обычно превышает 35 г/л и обычно больше за счет глобулинов, чем альбуминов, снижая A/G отношение. При A/G ниже 0,4 вероятность FIP очень высока; при A/G выше 0,8 FIP можно исключить; A/G в пределах 0,4-0,8 – необходимо учесть остальные диагностические параметры. Измерение A/G в выпотной жидкости – весьма ценный тест для подтверждения/исключения инфекционного перитонита в практической ветеринарии – его можно провести с помощью анализатора (позволяющего разделить альбумины и глобулины).

Уровень AGP.

Альфа-1 кислый гликопротеин (AGP) это белок острой фазы, который, как было установлено, очень полезен для дифференциации FIP от других клинически сходных состояний. При FIP уровень AGP обычно превышает 1500 мг/мл. В норме у кошек его уровень ниже 500 мг/мл. У кошек с бактериальным перитонитом уровень AGP также повышается, что требует цитологического исследования для дифференциальной диагностики. При кардиомиопатии, неинфекционных заболеваниях печени и опухолях, которые часто путают с FIP, уровень AGP – в пределах нормы.

Цитология.

При выпотной форме FIP выпотная жидкость содержит менее чем 3?10 в 9 степени клеток на литр (преимущественно нейтрофилы и макрофаги). При бактериальном перитоните и плеврите клетки крови содержатся в аспирате в значительно больших количествах и цитолог обычно визуально обнаруживает наличие бактерий (если они находятся интрацеллюлярно, это означает, что имеет место не просто контаминация образца). Цитология плеврального выпота полезна с точки зрения дифференциации от тимической лимфосаркомы, при которой

среди клеток обнаруживают преимущественно лимфоциты, выглядящие злокачественно. Вывод.

Таким образом, кошка с влажным FIP должна быть серопозитивна по FcoV, общее содержание белка в выпоте должно превышать 35 г/л и A/G соотношение должно быть ниже 0,4 (или как минимум, ниже 0,8), уровень AGP должен быть высоким (более 1500 мг/мл) и цитология должна выявить несколько ядерных клеток, среди которых большинство – нейтрофилы и макрофаги.

Диагностика невыпотного (сухого) инфекционного перитонита.

Титр антител к FcoV.

Титр антител к коронавирусу при сухой форме перитонита обычно эквивалентен или превышает 1280. Нулевой титр антител исключает сухой FIP.

Внимание! Многие здоровые кошки и кошки с другими болезнями имеют антитела к коронавирусу. Обнаружение только антител к коронавирусу НЕ является диагностическим критерием FIP, если остальные параметры диагностики FIP не выявлены). Здоровые кошки с высоким титром антител к коронавирусу НЕ являются больными сухой формой FIP.

Соотношение альбумин/глобулин (A/G).

При FIP концентрация глобулинов в плазме крови превышает 40 г/л. Следовательно, соотношение A/G снижено. При A/G ниже 0,4 вероятность FIP очень высока; помните, что снижение альбумина (например, при заболеваниях печени) может также искусственно занижать A/G соотношение. A/G свыше 0,8 исключает FIP; A/G в пределах 0,4-0,8 требует проведения дополнительных исследований.

Уровень AGP.

AGP это белок острой фазы, который, как было установлено, очень полезен для дифференциации FIP от других клинически сходных состояний. При FIP уровень AGP обычно превышает 1500 мг/мл. В норме у кошек его уровень ниже 500 мг/мл. Необходимо, конечно, помнить, что AGP – неспецифичный показатель и может повышаться при вирусных (не FIP), бактериальных (например, восходящий холангиогепатит или пиелонефрит) или грибковых инфекциях или после свежей травмы. Измерение AGP полезно для дифференциации FIP от неоплазии или неинфекционных болезней печени, при которых уровень AGP остается нормальным.

Гематология.

При невыпотном FIP наблюдают нерегенеративную анемию с гематокритом 30% или ниже, а также часто с нейтрофилией и сдвигом влево. Нужно помнить, что кошки с другими хроническими инфекциями могут иметь сходные гематологические изменения. Гематология полезна для дифференциации FIP от гемобартонеллеза, при котором анемия регенеративная и в эритроцитах можно обнаружить паразитов.

Вывод.

Кошки с сухим FIP должны иметь высокий уровень антител к коронавирусу, гиперглобулинемию и сниженное A/G отношение, гематокрит ниже 30% с нерегенеративной анемией и, вероятно, нейтрофилией. Клинически кошки должны проявлять потерю веса и обычно имеют поражения глаз, такие как ирит, инъекции сосудов сетчатки, преципитаты на роговице, водянистые или vitreous flare.

Помните! Здоровая кошка с антителами к коронавирусу НЕ является больной сухим FIP.

Автор: Diane Addie (пер. с англ. Кузнецов В.С.)

Источник